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viernes, 26 de junio de 2026

Respiración de plantas tropicales

Regresar a la [Ventilación]

El dióxido de carbono es uno de los materiales fundamentales para las plantas, porque aporta el carbono que luego será incorporado en azúcares mediante la fotosíntesis. Sin embargo, obtener CO₂ implica un problema fisiológico: cuando los estomas se abren para permitir su entrada, también se pierde vapor de agua por transpiración. Por eso, las plantas no solo dependen de abrir poros en la hoja; también han desarrollado mecanismos complementarios para mover, concentrar o almacenar carbono. Parte del CO₂ puede difundirse directamente a través de membranas, y en algunos tejidos también puede moverse disuelto en agua o en forma de bicarbonato, con ayuda de proteínas de membrana como acuaporinas y transportadores especializados.

Intercambio de gases en plantas C4

En las plantas llamadas C3, el dióxido de carbono entra por los estomas, se difunde hacia el mesófilo y llega al ciclo de Calvin, donde la enzima Rubisco lo incorpora a moléculas orgánicas de tres carbonos. Durante mucho tiempo pudo parecer que este era el modelo general de toda fotosíntesis vegetal. Sin embargo, en 1965, Hugo Kortschak y sus colaboradores estudiaron la caña de azúcar usando dióxido de carbono marcado con carbono 14, siguiendo una estrategia experimental semejante a la empleada por Calvin. El resultado fue inesperado: en vez de aparecer primero compuestos de tres carbonos, se detectaron moléculas de cuatro carbonos, principalmente oxaloacetato y malato.

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Figura 1. [Plantas C4]. En plantas C3, el CO₂ entra por el estoma, llega al mesófilo y la Rubisco lo fija en el ciclo de Calvin, perdiendo agua. En calor o sequía aumenta la fotorespiración. En plantas C4, la PEP carboxilasa captura CO₂ en el mesófilo y lo concentra en la vaina vascular, reduciendo pérdida de agua.

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Figura 2. [Fotosíntesis C4]. En las plantas C4, el carbono se fija primero en células del mesófilo mediante PEP carboxilasa, formando compuestos de cuatro carbonos como malato. Luego se transporta a la vaina del haz, donde libera CO₂ cerca de la Rubisco para el ciclo de Calvin. Esta separación reduce fotorespiración, ahorra agua y mejora fotosíntesis en ambientes cálidos.

Este hallazgo mostró que algunas plantas poseen una ruta adicional para capturar CO₂ antes de entregarlo al ciclo de Calvin. En las plantas C4, el dióxido de carbono se fija primero en las células del mesófilo mediante una enzima diferente a la Rubisco: la PEP carboxilasa. Esta enzima une bicarbonato al fosfoenolpiruvato, o PEP, formando oxaloacetato, una molécula de cuatro carbonos. Luego, estos compuestos se transforman y transportan hacia células internas, generalmente células de la vaina del haz vascular, donde liberan CO₂ cerca de la Rubisco. Así, la planta concentra carbono justo donde lo necesita.

Transporte del dióxido de carbono en una planta C4

El transporte de carbono en una planta C4 puede entenderse como un sistema de captura, traslado y liberación controlada. Primero, el CO₂ que entra en la hoja se convierte en bicarbonato dentro de las células del mesófilo. Luego, la PEP carboxilasa fija ese bicarbonato al PEP, produciendo oxaloacetato. Este oxaloacetato puede convertirse en malato o aspartato, moléculas de cuatro carbonos que sirven como vehículos químicos del carbono.

Después, el malato o compuestos equivalentes se desplazan hacia las células de la vaina del haz. Allí se descarboxilan, es decir, liberan CO₂ en una zona donde la concentración de oxígeno es relativamente menor y la Rubisco puede trabajar con mayor eficiencia. El carbono liberado entra entonces al ciclo de Calvin, igual que en una planta C3. El residuo de tres carbonos, generalmente piruvato, regresa al mesófilo, donde se regenera PEP mediante gasto de energía. Por eso, la ruta C4 no reemplaza al ciclo de Calvin: funciona como una mejora previa que concentra CO₂ alrededor de la Rubisco.

Utilidad evolutiva de la ruta C4

La importancia de la ruta C4 aparece cuando las condiciones ambientales hacen difícil mantener estomas muy abiertos. En ambientes cálidos, secos y con luz intensa, una planta pierde mucha agua si mantiene los estomas abiertos durante largo tiempo. Además, cuando baja la concentración interna de CO₂ y aumenta la proporción de oxígeno, la Rubisco puede actuar como oxigenasa en lugar de carboxilasa. Esto produce fotorespiración, un proceso que consume energía y reduce la eficiencia fotosintética, porque obliga a reciclar compuestos que no entran directamente en la producción de azúcares.

La ruta C4 reduce este problema porque la PEP carboxilasa tiene mayor afinidad por el bicarbonato y no reacciona con oxígeno como la Rubisco. Así, incluso con estomas parcialmente cerrados, la planta puede capturar carbono con eficacia y concentrarlo en las células donde ocurre el ciclo de Calvin. Esto permite disminuir la pérdida de agua, sostener altas tasas de fotosíntesis y reducir la fotorespiración. Por esta razón, muchas plantas C4 son pastos tropicales de crecimiento rápido, como la caña de azúcar, el maíz y el sorgo.

Sin embargo, la vía C4 no es superior en todos los ambientes. Su funcionamiento exige gasto adicional de ATP, porque el sistema debe regenerar PEP y mantener la separación entre células del mesófilo y células de la vaina del haz. En ambientes fríos, sombríos o con temporadas largas de baja iluminación, este costo energético puede no compensar. Por eso, las plantas C4 son especialmente exitosas en regiones tropicales, abiertas, cálidas y con alta radiación solar, donde el ahorro de agua y la reducción de la fotorespiración ofrecen una ventaja clara.

Intercambio de gases en plantas CAM

Las plantas CAM presentan otra solución al mismo problema: captar dióxido de carbono sin perder demasiada agua. Son frecuentes en ambientes secos, como desiertos o zonas con suelos pobres y exposición intensa. Ejemplos conocidos son muchos cactus, agaves, algunas bromelias y plantas suculentas. Estas plantas también usan la PEP carboxilasa, pero a diferencia de las C4, no separan el proceso principalmente entre tipos celulares, sino entre momentos del día.

Durante la noche, cuando la temperatura baja y la pérdida de agua es menor, las plantas CAM abren sus estomas. Entonces capturan CO₂ y lo fijan mediante PEP carboxilasa, formando compuestos de cuatro carbonos que se convierten en malato. Este malato se almacena en las vacuolas, generalmente en forma de ácido málico. Durante el día, cuando hay luz suficiente para producir ATP y poder reductor, los estomas se cierran para evitar la desecación. Luego, el malato sale de la vacuola, se descarboxila y libera CO₂ dentro de la hoja.

Figura 3. Las [plantas CAM] abren sus estomas durante la noche para captar CO₂ sin perder tanta agua. Ese carbono se fija con PEP carboxilasa, formando oxaloacetato y malato, que se almacena en vacuolas. Durante el día, los estomas se cierran, el malato libera CO₂ y la Rubisco lo usa en el ciclo de Calvin.

Ese CO₂ interno entra al ciclo de Calvin, donde la Rubisco lo incorpora a carbohidratos. Así, la planta realiza la fase fotosintética dependiente de la luz durante el día, pero evita abrir los estomas en las horas más peligrosas para la pérdida de agua. En resumen, las plantas CAM almacenan carbono de noche y lo usan de día. Su fotosíntesis final sigue dependiendo del ciclo de Calvin, como en las plantas C3 y C4, pero su estrategia temporal les permite sobrevivir en ambientes donde abrir los estomas durante el día sería demasiado costoso.

Referencias

Borland, A. M., Griffiths, H., Hartwell, J., & Smith, J. A. C. (2009). Exploiting the potential of plants with crassulacean acid metabolism for bioenergy production on marginal lands. Journal of Experimental Botany, 60(10), 2879–2896. https://doi.org/10.1093/jxb/erp118

Chen, J., Zhu, L., Hachez, C., & Chaumont, F. (2023). Aquaporins and CO₂ diffusion across biological membranes. Frontiers in Physiology, 14, 1205290. https://doi.org/10.3389/fphys.2023.1205290

Flexas, J., Ribas-Carbó, M., Díaz-Espejo, A., Galmés, J., & Medrano, H. (2008). Mesophyll conductance to CO₂: Current knowledge and future prospects. Plant, Cell & Environment, 31(5), 602–621. https://doi.org/10.1111/j.1365-3040.2007.01757.x

Hatch, M. D., & Slack, C. R. (1966). Photosynthesis by sugar-cane leaves: A new carboxylation reaction and the pathway of sugar formation. Biochemical Journal, 101(1), 103–111. https://doi.org/10.1042/bj1010103

Hatch, M. D. (2002). C₄ photosynthesis: Discovery and resolution. Photosynthesis Research, 73, 251–256. https://doi.org/10.1023/A:1020471718805

Kortschak, H. P., Hartt, C. E., & Burr, G. O. (1965). Carbon dioxide fixation in sugarcane leaves. Plant Physiology, 40(2), 209–213. https://doi.org/10.1104/pp.40.2.209

Lüttge, U. (2004). Ecophysiology of crassulacean acid metabolism (CAM). Annals of Botany, 93(6), 629–652. https://doi.org/10.1093/aob/mch087

Maurel, C., Boursiac, Y., Luu, D.-T., Santoni, V., Shahzad, Z., & Verdoucq, L. (2015). Aquaporins in plants. Physiological Reviews, 95(4), 1321–1358. https://doi.org/10.1152/physrev.00008.2015

Sage, R. F. (2004). The evolution of C₄ photosynthesis. New Phytologist, 161(2), 341–370. https://doi.org/10.1111/j.1469-8137.2004.00974.x

Sage, R. F., Sage, T. L., & Kocacinar, F. (2012). Photorespiration and the evolution of C₄ photosynthesis. Annual Review of Plant Biology, 63, 19–47. https://doi.org/10.1146/annurev-arplant-042811-105511

Taiz, L., Zeiger, E., Møller, I. M., & Murphy, A. (2015). Plant physiology and development (6th ed.). Sinauer Associates.

von Caemmerer, S. (2017). C₄ photosynthesis: 50 years of discovery and innovation. Journal of Experimental Botany, 68(2), 97–102. https://doi.org/10.1093/jxb/erw491

Winter, K., & Smith, J. A. C. (Eds.). (1996). Crassulacean acid metabolism: Biochemistry, ecophysiology and evolution. Springer. https://doi.org/10.1007/978-3-642-79060-7

 

Fisiología de los estomas en el intercambio de gases

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Los estomas son poros regulables ubicados principalmente en la epidermis de hojas y tallos jóvenes. Su función es permitir el intercambio de dióxido de carbono, oxígeno y vapor de agua entre la planta y el ambiente. En muchas plantas, los estomas se abren durante el día, cuando hay luz suficiente para realizar fotosíntesis y se necesita entrada de CO₂. Durante la noche suelen cerrarse, porque la fotosíntesis se reduce o se detiene y mantenerlos abiertos solo aumentaría la pérdida de agua. La principal excepción son muchas plantas CAM, como cactus y agaves, que abren sus estomas de noche para ahorrar agua y almacenan CO₂ en forma de ácidos orgánicos. Las plantas C4, en cambio, no abren necesariamente sus estomas de noche, pero poseen mecanismos bioquímicos que les permiten usar el CO₂ con mayor eficiencia.

Cada estoma está rodeado por dos células de guarda o células oclusivas, encargadas de abrir y cerrar el poro. Estas células cambian de forma según su turgencia, es decir, según la presión interna producida por la entrada de agua. Cuando las células de guarda absorben agua, se hinchan, se curvan y dejan abierto el poro estomático. Cuando pierden agua, disminuye su turgencia, se relajan y el poro se cierra. Este mecanismo permite equilibrar dos necesidades opuestas: captar CO₂ para la fotosíntesis y evitar una pérdida excesiva de agua por transpiración.

La apertura estomática comienza cuando la planta detecta la luz solar, especialmente la luz azul, cuyas longitudes de onda se encuentran aproximadamente entre 400 y 500 nanómetros. La luz no solo es una fuente de energía para la fotosíntesis; también actúa como una señal ambiental que modifica procesos celulares y moleculares. En las células de guarda existen pigmentos y proteínas sensibles a la luz azul, como las fototropinas, que activan rutas de señalización. Estas rutas estimulan bombas de protones en la membrana plasmática y preparan a la célula para modificar su balance iónico.

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Una de las primeras respuestas es la activación de una bomba de protones, que expulsa iones hidrógeno, H⁺, desde el interior de las células de guarda hacia el exterior. Este transporte requiere ATP, porque mueve protones en contra de su gradiente de concentración. Como resultado, el interior de la célula queda relativamente más negativo, mientras el exterior se vuelve más positivo. Esa diferencia de cargas genera un potencial electroquímico que favorece la entrada de otros iones. De manera paralela, pueden activarse procesos metabólicos como la síntesis de malato y la degradación de almidón, lo que aporta solutos adicionales al interior celular.

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El siguiente paso importante es el ingreso de iones potasio, K⁺, hacia las células de guarda. Estos iones entran por canales de membrana sensibles al voltaje, que se abren cuando la diferencia eléctrica entre ambos lados de la membrana alcanza un nivel adecuado. Este proceso se parece, en cierto sentido, a otros mecanismos biológicos donde los cambios de voltaje controlan la apertura de canales iónicos, aunque en las plantas no cumple la misma función que los impulsos nerviosos animales. La entrada de potasio aumenta la concentración interna de solutos y prepara a la célula para atraer agua.

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Además del potasio, también participan otros solutos, como iones cloruro, Cl⁻, y malato, que ayudan a mantener el equilibrio eléctrico y osmótico. El malato puede formarse a partir del metabolismo interno de las células de guarda, mientras que el cloruro puede ingresar desde células vecinas. La acumulación conjunta de K⁺, Cl⁻, malato y otros compuestos solubles reduce el potencial hídrico dentro de las células de guarda. En términos sencillos, el interior celular queda más concentrado que el exterior, por lo que el agua tiende a entrar por ósmosis.

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Cuando el agua entra en las células de guarda, aumenta la presión de turgencia. Debido a que estas células tienen paredes con engrosamientos desiguales y una orientación particular de fibras de celulosa, no se hinchan como globos uniformes. En lugar de eso, se curvan de manera coordinada y separan sus paredes internas, formando la abertura del estoma. Así, el poro se abre y permite la entrada de CO₂ hacia los tejidos fotosintéticos internos de la hoja. Al mismo tiempo, salen O₂ y vapor de agua, lo que muestra la ventaja y el costo de este mecanismo.

El cierre de los estomas no es simplemente la inversión exacta del proceso de apertura. Durante el día, las concentraciones de potasio en las células de guarda pueden disminuir gradualmente, mientras otros solutos, como la sacarosa, ayudan a mantener la presión osmótica. Esta sacarosa puede provenir de la fotosíntesis local o de la degradación de almidón almacenado en las propias células de guarda. Mientras haya suficientes solutos, el agua permanece dentro de las células, la turgencia se mantiene y el estoma continúa abierto.

Al acercarse el atardecer, cambian las señales luminosas y metabólicas. Parte de la sacarosa puede convertirse nuevamente en almidón, una molécula osmóticamente menos activa. Al disminuir la concentración de solutos libres, las células de guarda pierden presión osmótica, el agua sale hacia células vecinas y la turgencia disminuye. Como consecuencia, las células pierden su curvatura y el poro estomático se cierra paulatinamente. Este cierre nocturno reduce la pérdida de agua cuando ya no hay suficiente luz para sostener una fotosíntesis intensa.

El movimiento estomático también responde a condiciones ambientales como sequía, temperatura, humedad del aire, concentración interna de CO₂ y señales hormonales. Una hormona clave es el ácido abscísico, que aumenta cuando la planta sufre déficit de agua. Esta señal favorece la salida de iones, reduce la turgencia de las células de guarda y provoca el cierre estomático. De esta forma, los estomas funcionan como válvulas microscópicas que integran luz, agua, metabolismo y ambiente. Su comportamiento no busca maximizar una sola función, sino optimizar el equilibrio entre fotosíntesis, transpiración y supervivencia vegetal.

Referencias

Assmann, S. M., & Shimazaki, K. (1999). The multisensory guard cell: Stomatal responses to blue light and abscisic acid. Plant Physiology, 119(3), 809–815. https://doi.org/10.1104/pp.119.3.809

Farquhar, G. D., & Sharkey, T. D. (1982). Stomatal conductance and photosynthesis. Annual Review of Plant Physiology, 33, 317–345. https://doi.org/10.1146/annurev.pp.33.060182.001533

Hetherington, A. M., & Woodward, F. I. (2003). The role of stomata in sensing and driving environmental change. Nature, 424(6951), 901–908. https://doi.org/10.1038/nature01843

Inoue, S., Kinoshita, T., & Shimazaki, K. (2017). Blue light regulation of stomatal opening and the plasma membrane H+-ATPase. Plant Physiology, 174(2), 531–538. https://doi.org/10.1104/pp.17.00166

Schroeder, J. I., Allen, G. J., Hugouvieux, V., Kwak, J. M., & Waner, D. (2001). Guard cell signal transduction. Annual Review of Plant Physiology and Plant Molecular Biology, 52, 627–658. https://doi.org/10.1146/annurev.arplant.52.1.627

Taiz, L., Zeiger, E., Møller, I. M., & Murphy, A. (2015). Plant physiology and development (6th ed.). Sinauer Associates.

Willmer, C., & Fricker, M. (1996). Stomata (2nd ed.). Springer. https://doi.org/10.1007/978-94-011-0579-8

domingo, 17 de mayo de 2026

Anatomía de la hoja.

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Imaginemos que estamos en un curso de ingeniería y se nos asigna la tarea de diseñar un panel capaz de recolectar energía solar y transformarla en energía química útil para sostener el crecimiento, la reparación y el funcionamiento de estructuras biológicas. ¿Por dónde empezar? Una opción sería revisar tesis, prototipos y diseños tecnológicos; otra, más elegante, sería mirar directamente hacia la naturaleza. Allí ya existe una solución refinada por millones de años de evolución: la hoja. De hecho, incluso la energía almacenada en el petróleo tuvo originalmente relación con la energía capturada del Sol por organismos fotosintéticos antiguos.

Las hojas son órganos especializados en captar radiación electromagnética, principalmente luz visible, y convertirla en energía química mediante la fotosíntesis. Las plantas invierten una enorme cantidad de recursos en producirlas, porque de ellas depende buena parte de su supervivencia. Un árbol grande de arce puede formar cada año decenas de metros cuadrados de superficie foliar, con un costo metabólico considerable. Sin embargo, esa inversión se justifica porque las hojas capturan dióxido de carbono, reciben agua, absorben luz y fabrican carbohidratos, moléculas que luego sirven como punto de partida para producir lípidos, proteínas, vitaminas, celulosa y muchas otras sustancias celulares.

Figura 1. [Anatomía de la hoja]. La hoja posee epidermis y cutícula protectoras que reducen evaporación, pero limitan el intercambio gaseoso. Los estomas, regulados por células oclusivas, permiten entrada de CO₂ y salida de O₂ y vapor de agua. El mesófilo, con parénquima en empalizada y esponjoso, realiza fotosíntesis. Xilema y floema transportan agua, minerales y azúcares.

La estructura de una hoja está profundamente adaptada a esta función. La mayoría de las hojas son delgadas y planas, lo que aumenta la superficie expuesta a la luz y reduce la distancia que deben recorrer los gases por difusión. Esta forma favorece tanto la absorción de luz solar como el intercambio de dióxido de carbono y oxígeno. Por eso, una hoja no debe entenderse como una simple lámina verde, sino como un órgano complejo que combina protección, ventilación, transporte de agua, distribución de azúcares y captura energética.

Figura 2. [Ventilación de la hoja]. El interior de la hoja posee espacios gaseosos entre células del mesófilo, especialmente en el tejido esponjoso. Por allí se difunden CO₂, O₂ y vapor de agua. Antes de cruzar la membrana celular, los gases se disuelven en películas acuosas con pectinas, mucílagos e iones. Así combina difusión rápida en aire y superficies húmedas funcionales.

Cutícula

Para controlar la pérdida de agua, las plantas vasculares poseen una capa externa delgada, cerosa e impermeable llamada cutícula. Esta estructura reduce la evaporación y permite que la planta sobreviva en ambientes terrestres donde el aire puede secar rápidamente los tejidos. Sin embargo, esta misma adaptación crea un problema: al limitar la salida de agua también dificulta el libre intercambio de gases fotosintéticos. Una hoja completamente sellada conservaría muy bien su agua, pero no podría captar suficiente CO₂ ni eliminar el O₂ producido durante la fotosíntesis.

Para resolver esta contradicción, las plantas poseen pequeños poros regulables llamados estomas. Estos permiten la entrada de dióxido de carbono y la salida de oxígeno y vapor de agua, pero no permanecen abiertos de manera permanente. La planta puede abrirlos o cerrarlos según la luz, la humedad, la temperatura y su estado hídrico. En las zonas donde la fotosíntesis es más intensa, la cutícula puede ser más delgada y la densidad de estomas mayor, lo que favorece la difusión de gases y optimiza el rendimiento fotosintético.

Epidermis

La hoja está formada por varios tejidos organizados para proteger, captar luz e intercambiar sustancias. En sus dos caras presenta una epidermis: la epidermis superior cubre el haz, mientras la epidermis inferior cubre el envés. Muchas células epidérmicas carecen de cloroplastos, por lo que son relativamente transparentes y permiten el paso de la luz hacia los tejidos fotosintéticos internos. Además, las paredes celulares orientadas hacia el exterior suelen ser más gruesas, lo que aporta protección frente a heridas mecánicas, radiación excesiva y pérdida de agua.

La superficie amplia de las hojas favorece la captura de luz, pero también incrementa el riesgo de evaporación. Para reducir esta pérdida, las células epidérmicas secretan la cutícula, compuesta principalmente por sustancias cerosas como la cutina. Su grosor varía entre especies y ambientes. Las plantas de climas cálidos, secos o con alta exposición solar suelen tener cutículas más gruesas, mientras que las plantas de ambientes húmedos pueden presentar cutículas más delgadas.

Figura 3. [Zonas ventilatorias de una planta]. En las plantas vasculares, las zonas verdes, como hojas y tallos jóvenes, realizan fotosíntesis e intercambio gaseoso mediante estomas. Las flores son hojas modificadas, orientadas a reproducción y atracción por pigmentos. En plantas leñosas, parte interna puede estar muerta, mientras tejidos externos vivos conducen sustancias; por eso dañar troncos favorece infecciones y debilitamiento.

En muchas hojas, la epidermis también posee tricomas, estructuras semejantes a pelos con funciones diversas. Algunos tricomas reducen la pérdida de agua al retener una capa de aire húmedo cerca de la superficie foliar. Otros reflejan parte de la radiación solar, disminuyendo el calentamiento excesivo. También existen tricomas defensivos, capaces de secretar sustancias irritantes, pegajosas o tóxicas que dificultan el ataque de herbívoros. Cuando son largos o abundantes, pueden incluso entorpecer el movimiento de insectos sobre la hoja.

Estomas

Los estomas son aberturas microscópicas de la epidermis que permiten el intercambio de gases entre el interior de la hoja y el ambiente. Cada estoma está asociado a dos células oclusivas o células de guarda, encargadas de abrir y cerrar el poro. Estas células cambian de forma según su contenido de agua e iones. Cuando absorben agua, se vuelven turgentes y abren el poro; cuando pierden agua, se relajan y lo cierran. De esta manera, la planta regula simultáneamente la entrada de CO₂, la salida de O₂ y la pérdida de vapor de agua.

Las células de guarda pueden estar acompañadas por células subsidiarias, que ayudan a movilizar agua e iones durante la apertura y cierre estomático. Como los estomas son zonas donde la cutícula se interrumpe, también representan puntos vulnerables: por ellos puede perderse agua y, en algunos casos, ingresar patógenos vegetales. Por eso, el control estomático es una función fisiológica decisiva para equilibrar fotosíntesis, hidratación y defensa.

En muchas plantas terrestres con hojas horizontales, los estomas son más abundantes en el envés. Esta ubicación reduce la exposición directa al Sol y disminuye la pérdida de agua. En algunas especies, incluso se encuentran casi exclusivamente en la cara inferior. En cambio, en plantas flotantes como los lirios de agua, los estomas se localizan principalmente en el haz, porque el envés permanece sumergido y el intercambio gaseoso sería más lento a través del agua. Esto muestra cómo la posición de los estomas responde al ambiente y al modo de vida de cada planta.

Planta con flores rojas y amarillas

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Figura 4. [Tricomas]. Los tricomas son prolongaciones epidérmicas que protegen plantas contra desecación, exceso de luz y herbívoros. Algunos retienen humedad o reflejan radiación; otros secretan sustancias irritantes, pegajosas o tóxicas. En Drosera spp., tricomas glandulares producen mucílago para atrapar insectos y enzimas digestivas para obtener nitrógeno y minerales en suelos pobres, manteniendo la fotosíntesis como fuente energética principal vegetal adaptativa especializada eficiente.

Mesófilo

El mesófilo es el tejido interno de la hoja donde ocurre la mayor parte de la fotosíntesis. Se encuentra entre la epidermis superior y la epidermis inferior, como si estuviera en medio de un sándwich protector. Está formado principalmente por células de parénquima ricas en cloroplastos, los organelos encargados de capturar luz y transformar dióxido de carbono y agua en compuestos orgánicos.

En muchas hojas, el mesófilo se divide en dos regiones. La primera es el parénquima en empalizada, ubicado generalmente hacia la parte superior de la hoja. Sus células son alargadas, están organizadas en columnas y contienen numerosos cloroplastos, por lo que constituyen la zona principal de captación luminosa. La segunda región es el parénquima esponjoso, ubicado hacia la parte inferior. Sus células están menos compactadas y dejan grandes espacios de aire entre ellas, lo que facilita la difusión de CO₂, O₂ y vapor de agua.

Imagen que contiene Patrón de fondo

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Figura 5. [Estomas]. Los estomas son poros microscópicos necesarios para captar CO₂ y liberar O₂, pero también crean vulnerabilidades: pérdida de agua, entrada de patógenos y deshidratación. Las plantas reducen estos riesgos con células oclusivas, cierre estomático, cutícula, tricomas, estomas en el envés o metabolismo CAM. La evolución optimiza equilibrios, no maximiza una sola función.

Los espacios intercelulares del mesófilo esponjoso pueden ocupar una gran proporción del volumen interno de la hoja. Esta organización permite que el dióxido de carbono que entra por los estomas se distribuya rápidamente hacia las células fotosintéticas. Aunque el mesófilo esponjoso también realiza fotosíntesis, su función principal es facilitar la ventilación interna de la hoja. A diferencia de muchos tejidos animales, los espacios entre las células vegetales no están llenos de líquido o matriz extracelular, sino de aire, lo que permite una difusión gaseosa mucho más rápida.

En hojas expuestas directamente a la luz solar, el parénquima en empalizada puede presentar dos o más capas. Esto ocurre porque la luz disponible es suficiente para penetrar varias capas celulares y activar la fotosíntesis en profundidad. En hojas de sombra, en cambio, la organización puede ser más delgada, ya que no tendría sentido construir demasiadas capas fotosintéticas si la luz no alcanza para activarlas de manera eficiente.

Venas o haces vasculares

Las venas de la hoja, también llamadas haces vasculares, se extienden a través del mesófilo y forman una red ramificada. Su función se parece, en cierta medida, a una red de distribución interna, aunque no equivalen al sistema circulatorio animal. En ellas se encuentran dos tejidos conductores: el xilema y el floema. El xilema transporta agua y minerales desde las raíces hacia la hoja; el floema distribuye los azúcares producidos por fotosíntesis hacia tallos, raíces, frutos, flores y tejidos en crecimiento.

Las venas se ramifican tanto que casi ninguna célula del mesófilo queda demasiado lejos de una fuente de agua o de una vía de transporte. Esto es fundamental, porque la fotosíntesis requiere agua, dióxido de carbono y luz. Sin embargo, las venas no transportan gases como lo haría la sangre en los animales. El oxígeno y el dióxido de carbono se mueven principalmente por difusión a través de los estomas, los espacios intercelulares y las superficies húmedas de las células. Así, la hoja integra dos sistemas complementarios: una red vascular para líquidos y solutos, y una red de espacios internos para el intercambio de gases.

Referencias

Adamec, L. (1997). Mineral nutrition of carnivorous plants: A review. The Botanical Review, 63(3), 273–299. https://doi.org/10.1007/BF02857953

Barthlott, W., Porembski, S., Seine, R., & Theisen, I. (2007). The curious world of carnivorous plants: A comprehensive guide to their biology and cultivation. Timber Press.

Cutler, D. F., Botha, T., & Stevenson, D. W. (2007). Plant anatomy: An applied approach. Blackwell Publishing.

Evert, R. F. (2006). Esau’s plant anatomy: Meristems, cells, and tissues of the plant body: Their structure, function, and development (3rd ed.). Wiley.

Farquhar, G. D., & Sharkey, T. D. (1982). Stomatal conductance and photosynthesis. Annual Review of Plant Physiology, 33, 317–345. https://doi.org/10.1146/annurev.pp.33.060182.001533

Glover, B. J. (2000). Differentiation in plant epidermal cells. Journal of Experimental Botany, 51(344), 497–505. https://doi.org/10.1093/jexbot/51.344.497

Hetherington, A. M., & Woodward, F. I. (2003). The role of stomata in sensing and driving environmental change. Nature, 424, 901–908. https://doi.org/10.1038/nature01843

Hopkins, W. G., & Hüner, N. P. A. (2009). Introduction to plant physiology (4th ed.). Wiley.

Juniper, B. E., Robins, R. J., & Joel, D. M. (1989). The carnivorous plants. Academic Press.

Lambers, H., Chapin, F. S., III, & Pons, T. L. (2008). Plant physiological ecology (2nd ed.). Springer.

Mauseth, J. D. (2017). Botany: An introduction to plant biology (7th ed.). Jones & Bartlett Learning.

Nobel, P. S. (2009). Physicochemical and environmental plant physiology (4th ed.). Academic Press.

Raven, P. H., Evert, R. F., & Eichhorn, S. E. (2013). Biology of plants (8th ed.). W. H. Freeman.

Salisbury, F. B., & Ross, C. W. (1992). Plant physiology (4th ed.). Wadsworth.

Taiz, L., Zeiger, E., Møller, I. M., & Murphy, A. (2015). Plant physiology and development (6th ed.). Sinauer Associates.

Wagner, G. J., Wang, E., & Shepherd, R. W. (2004). New approaches for studying and exploiting an old protuberance, the plant trichome. Annals of Botany, 93(1), 3–11. https://doi.org/10.1093/aob/mch011

Werker, E. (2000). Trichome diversity and development. Advances in Botanical Research, 31, 1–35. https://doi.org/10.1016/S0065-2296(00)31005-9

Willmer, C., & Fricker, M. (1996). Stomata (2nd ed.). Springer.

Ventilación en plantas

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En las plantas verdes ocurren dos procesos dependientes del intercambio gaseoso: la fotosíntesis y la respiración celular aeróbica. En la respiración celular, la planta utiliza moléculas orgánicas reducidas, como azúcares y lípidos, que almacenan alta energía química. Estas moléculas son oxidadas con ayuda del oxígeno atmosférico, lo que permite obtener energía celular, principalmente en forma de ATP, además de producir dióxido de carbono y agua. Para el tema de la ventilación organísmica, es decir, el intercambio de gases entre un ser vivo y su ambiente, esto significa que la respiración celular se asocia con ingreso de oxígeno y emisión de dióxido de carbono.

En la fotosíntesis, el intercambio gaseoso ocurre en sentido contrario. La planta incorpora dióxido de carbono desde el ambiente y, con ayuda de la luz solar y del agua, fabrica azúcares y libera oxígeno molecular como producto de desecho. Por tanto, durante la fotosíntesis hay entrada de CO₂ y salida de O₂. Esto no significa que la planta “solo respire al revés”, sino que realiza dos procesos distintos: la fotosíntesis construye materia orgánica usando energía luminosa, mientras la respiración celular degrada parte de esa materia para obtener energía utilizable.

Figura 1. [Modelo simple de la respiración aeróbica]. La respiración celular aeróbica usa glucosa y oxígeno molecular para producir ATP, dióxido de carbono y agua. En animales, esto obliga a captar O₂ del ambiente y eliminar CO₂ como desecho. La ventilación mueve esos gases, mientras la circulación los distribuye. Así, pulmones, branquias o tráqueas sostienen el metabolismo energético celular.

Figura 2. [Resumen de la fotosíntesis]. La fotosíntesis también requiere intercambio gaseoso, usando los mismos gases que la respiración aeróbica, pero en dirección inversa. La planta capta dióxido de carbono y libera oxígeno molecular. Con luz y agua fabrica glucosa, fijando carbono en materia orgánica. Parte del oxígeno se reutiliza en respiración celular, pero el excedente sostiene la atmósfera oxigenada.

En las plantas, ambos procesos no están perfectamente equilibrados a escala planetaria. Si todo el oxígeno producido por la fotosíntesis fuera consumido inmediatamente por la respiración de plantas, animales, hongos y microorganismos, la atmósfera no conservaría niveles elevados de O₂. Una parte del oxígeno producido es reutilizada por las propias plantas, otra es consumida por organismos aeróbicos y otra participa en la oxidación de minerales de la corteza terrestre. Sin embargo, cuando parte del carbono orgánico queda enterrado o retirado temporalmente de la descomposición, queda un excedente relativo de oxígeno en la atmósfera. Por eso, la concentración actual de oxígeno atmosférico depende del equilibrio histórico entre fotosíntesis, respiración, descomposición, enterramiento de carbono y oxidación de materiales terrestres.

Dormir con una planta al lado

Las raíces, los tallos y las hojas realizan respiración celular aeróbica durante el día y la noche, pero sus tasas de consumo de oxígeno suelen ser mucho menores que las de la mayoría de los animales. La fotosíntesis, en cambio, solo ocurre cuando hay luz suficiente, y durante ella las hojas intercambian grandes volúmenes de gases: incorporan dióxido de carbono y liberan oxígeno molecular. Cada hoja está adaptada para regular sus propias necesidades gaseosas mediante superficies internas húmedas, espacios de aire y estomas. De esta diferencia surge el mito popular de que dormir con una planta al lado es peligroso porque “roba” el oxígeno de la habitación. En realidad, la demanda biológica de oxígeno de una planta doméstica durante la noche es muy baja comparada con la de un animal. Dormir con un perro, un gato o con otra persona consume mucho más oxígeno que dormir con una planta en la habitación.

Figura 3. [Dormir con plantas]. Dormir con plantas no es peligroso por consumo de oxígeno, ya que su respiración nocturna es mínima frente a la de animales o personas. Los riesgos reales dependen del manejo: exceso de humedad, moho, alergias, plantas tóxicas para mascotas o niños, y agua estancada en macetas o floreros, que puede criar mosquitos como Aedes aegypti.

Intercambio de gases en plantas no vasculares

Las plantas no vasculares, como muchos musgos y hepáticas, presentan una organización corporal pequeña, delgada y muy dependiente de la humedad ambiental. Esto les ofrece una ventaja: gran parte de su superficie puede participar directamente en el intercambio gaseoso, sin necesidad de órganos respiratorios especializados. Al vivir cerca del agua o en ambientes húmedos, el oxígeno, el dióxido de carbono y el vapor de agua pueden moverse por difusión a través de sus tejidos superficiales. Sin embargo, esta estrategia también tiene un costo: si el ambiente se seca, el agua se evapora rápidamente desde las mismas superficies que permiten el intercambio de gases. Por eso, estas plantas suelen ser pequeñas, de baja demanda metabólica y muy sensibles a la desecación. Al igual que los animales, no fijan directamente el nitrógeno atmosférico, por lo que sus gases más importantes son oxígeno, dióxido de carbono y vapor de agua.

Intercambio de gases en plantas vasculares

Las plantas vasculares enfrentan un problema evolutivo distinto. Para sobrevivir en ambientes terrestres más secos, desarrollaron una cutícula protectora que reduce la pérdida de agua por evaporación. Esta cubierta cerosa fue clave para la vida en tierra firme, porque evita que los tejidos se deshidraten rápidamente. Sin embargo, también limita el paso libre de gases a través de la superficie corporal. Si toda la planta estuviera completamente sellada, no podría incorporar CO₂ para la fotosíntesis ni eliminar el O₂ producido en exceso; tampoco podría intercambiar gases asociados a la respiración celular. Para resolver este conflicto, las zonas verdes de las plantas presentan estomas, pequeños poros regulables que permiten la entrada y salida de gases sin dejar la superficie permanentemente abierta.

Los estomas funcionan como válvulas microscópicas controladas por células especializadas llamadas células oclusivas. Cuando se abren, permiten la entrada de dióxido de carbono hacia los tejidos fotosintéticos y la salida de oxígeno y vapor de agua. Cuando se cierran, reducen la pérdida hídrica, especialmente en condiciones de calor, sequía o baja humedad. A diferencia de los animales, las plantas no poseen un sistema circulatorio integrado al intercambio gaseoso: el xilema transporta agua y minerales, y el floema distribuye azúcares, pero los gases no son llevados por una sangre equivalente. Cada hoja, tallo verde o raíz joven regula localmente su propio intercambio gaseoso. Así, la planta resuelve el equilibrio entre fotosíntesis, respiración celular y conservación de agua mediante una combinación de cutícula, estomas, tejidos internos aireados y control fisiológico de la apertura estomática.

Tejido vivo y superficies de intercambio gaseoso

En las plantas, la distancia que deben recorrer los gases por difusión suele ser relativamente corta, porque la mayoría de los tejidos metabólicamente activos se encuentra cerca de superficies internas o externas conectadas con el aire. A diferencia de muchos animales, las plantas no necesitan un sistema circulatorio especializado para transportar oxígeno y dióxido de carbono hacia cada célula. En las hojas, esto es evidente: el dióxido de carbono entra por los estomas, circula por los espacios internos del tejido y llega a las células fotosintéticas. Allí puede ser usado en la fotosíntesis, mientras que el oxígeno producido se difunde hacia el exterior.

En los tallos, la situación es más variable. En tallos jóvenes existen muchas células vivas cerca de la superficie, como las de la epidermis, la corteza, el floema y algunos tejidos parenquimáticos. En tallos leñosos, una parte importante del interior, especialmente el xilema maduro, está formada por células muertas que funcionan como soporte y conducción de agua. Esto reduce la demanda metabólica interna, porque no todo el volumen del tallo está compuesto por tejido vivo que necesite respirar intensamente. Aun así, las células vivas del tallo requieren intercambio gaseoso, y este puede realizarse mediante lenticelas, espacios intercelulares y zonas no completamente impermeabilizadas.

La organización del parénquima también facilita el intercambio de gases. Sus células no están compactadas como ladrillos sellados, sino separadas por espacios intercelulares llenos de aire. Esto permite que el oxígeno, el dióxido de carbono y el vapor de agua se desplacen con relativa rapidez dentro del tejido vegetal. Los gases se difunden mucho más rápido en un medio gaseoso que en un medio líquido; sin embargo, antes de entrar a una célula viva, deben disolverse en la fina película acuosa que recubre sus paredes celulares. Así, la planta combina cámaras internas de aire, superficies húmedas, estomas y tejidos poco compactos para mantener el intercambio gaseoso sin depender de pulmones, branquias ni sangre.

Referencias

Campbell, N. A., Urry, L. A., Cain, M. L., Wasserman, S. A., Minorsky, P. V., & Orr, R. B. (2021). Campbell biology (12th ed.). Pearson.

Evert, R. F. (2006). Esau’s plant anatomy: Meristems, cells, and tissues of the plant body: Their structure, function, and development (3rd ed.). Wiley.

Farquhar, G. D., & Sharkey, T. D. (1982). Stomatal conductance and photosynthesis. Annual Review of Plant Physiology, 33, 317–345. https://doi.org/10.1146/annurev.pp.33.060182.001533

Hetherington, A. M., & Woodward, F. I. (2003). The role of stomata in sensing and driving environmental change. Nature, 424, 901–908. https://doi.org/10.1038/nature01843

Hopkins, W. G., & Hüner, N. P. A. (2009). Introduction to plant physiology (4th ed.). Wiley.

Lambers, H., Chapin, F. S., III, & Pons, T. L. (2008). Plant physiological ecology (2nd ed.). Springer.

Mauseth, J. D. (2017). Botany: An introduction to plant biology (7th ed.). Jones & Bartlett Learning.

Nobel, P. S. (2009). Physicochemical and environmental plant physiology (4th ed.). Academic Press.

Raven, P. H., Evert, R. F., & Eichhorn, S. E. (2013). Biology of plants (8th ed.). W. H. Freeman.

Sage, R. F., & Kubien, D. S. (2007). The temperature response of C₃ and C₄ photosynthesis. Plant, Cell & Environment, 30(9), 1086–1106. https://doi.org/10.1111/j.1365-3040.2007.01682.x

Taiz, L., Zeiger, E., Møller, I. M., & Murphy, A. (2015). Plant physiology and development (6th ed.). Sinauer Associates.

Willmer, C., & Fricker, M. (1996). Stomata (2nd ed.). Springer.

World Health Organization. (2024). Dengue and severe dengue. https://www.who.int/news-room/fact-sheets/detail/dengue-and-severe-dengue